1. Концентрация растворов химических дезинфицирующих средств для профилактической и вынужденной дезинфекции, %
Дезинфицирующие средства | Группы устойчивости возбудителей | |||
1 | 2 | 3 | 4 | |
Натр едкий | 2 | 4 | 3 | 10 |
Формалин, параформ | 2 | 2 | 3 | 4 |
Хлорная известь | 2 | 3 | 5 | 5 |
Нейтральный гипохлорит кальция | 2 | 3 | 5 | 5 |
Глутаровый альдегид | 0,5 | 1 | 1 | 2 |
Однохлористый йод | 5 | 5 | 10 | 10 |
Свежегашеная известь | 20 | 20 | 20 | - |
Кальцинированная сода | 5 | - | - | - |
Препараты на основе надуксусной кислоты | 0,3 | 0,5 | 1,0 | - |
Перекись водорода | 3 | 4 | 5 | 7 |
По устойчивости к химическим дезинфицирующим средствам возбудителей основных инфекционных болезней животных и птицы делят на четыре группы: малоустойчивые, устойчивые, высокоустойчивые и особо устойчивые (таблица 2).
2. Устойчивость к химическим дезинфицирующим средствам
возбудителей основных инфекционных болезней
1 | 2 | 3 | 4 |
Малоустойчивые | Устойчивые | Высокоустойчивые | Особо устойчивые |
Лейкоз, бруцеллез, колибактериоз, сальмонеллез, лептоспироз, листериоз, болезнь Ауески, пастереллез, трихомоноз, кампилобактериоз, трипаносомоз, токсоплазмоз, инфекционный ринотрахеит, парагрипп, вирусная диарея крупного рогатого скота, контагиозная эктима, инфекционная агалактия, контагиозная плевропневмония овец и коз, отечная болезнь, инфекционный атрофический ринит, дизентерия, вирусный гастроэнтерит, балантидиоз, гемофилезная плевропневмония, рожа свиней, ринопневмония лошадей, пуллороз (тиф), микоплазмоз птиц, миксоматоз кроликов, диарейные заболевания молодняка, вызываемые условно-патогенной микрофлорой (протей, клебсиеллы, морганеллы и т.п.) | Аденовирусная инфекция, ящур, оспа, туляремия, орнитоз, диплококкоз, стафилококкоз, стрептококкоз, бешенство, чума всех видов животных, некробактериоз, аспергиллез, кандидамикоз, трихофития, микроспория, хламидиоз, риккетсиоз, энтеровирусные инфекции, грипп сельскохозяйственных животных и птиц, злокачественная катаральная горячка, перипневмонии, актиномикоз крупного рогатого скота, инфекционная катаральная лихорадка, копытная гниль и инфекционный мастит овец, везикулярная болезнь свиней, инфекционная анемия, инфекционный энцефаломиелит, эпизоотический лимфангит, сап и мыт лошадей, гепатит утят, вирусный энтерит гусят, инфекционный бронхит, ларинготрахеит, болезнь Марека, болезнь Гамборо, инфекционный энцефаломиелит и ньюкаслская болезни птиц, вирусный энтерит, алеутская болезнь, псевдомоноз и инфекционный гепатит плотоядных, вирусная геморрагическая болезнь кроликов. | Туберкулез животных и птиц, паратуберкулез. | Сибирская язва, анаэробная дизентерия ягнят, анаэробная энтеротоксемия поросят, брадзот, злокачественный отек, инфекционная энтеротоксемия овец, эмкар, другие споровые инфекции, кокцидиоз. |
Рис. 1 Выборка яиц из лотка
3. Теперь есть образцы для проверки роста бактерий (рис. 2).
4. В течение 24 часов необходимо провести инкубацию чаш с агаром. Это также можно сделать в любом инкубационном шкафу, поместив чаши вместе с уже заложенным яйцом.
Рис. 2 Образцы для проверки роста бактерий
5. Теперь следует провести анализ результатов:
Результаты образцов в чашах с агаром, полученные от прокатывания яиц до начала фумигации, необходимо сравнить с результатами, полученными после ее окончания. Одинаковые результаты или незначительные улучшения сигнализируют о возникновении проблемы. Возможно, эффективность фумиганта была недостаточной или время его воздействия было выбрано неправильно. Если эти условия были соблюдены, необходимо проверить циркуляцию воздуха в помещении для фумигации. Отличия результатов могут быть связаны с разницей циркуляции воздуха (воздействия фумиганта) в одной части помещения по сравнению с другой. Решить эту проблему можно благодаря улучшению потока воздуха в месте ее возникновения. После проверки помещения для фумигации и устранения возможных проблем вы можете быть уверены, что минимизировали риск заражения яиц микроорганизмами.
УФЛ - облучение типа С. Эта обработка возможна при условии разработки точных методов, (точное время экспозиции без нанесения вреда эмбриону составляет от 40 секунд до 5 минут). Сегодня трудно себе представить, как все яйца со всех сторон могут подвергаться воздействию УФЛ - лучей, даже если они собраны в инкубационные лотки. УФЛ – лучи типа С эффективны против бактерий и грибков, находящихся на мембране скорлупы, и могут проникать через скорлупу, однако УФЛ – лучи могут быть остановлены пылью и другими органическими загрязнениями. Бактерицидными свойствами обладают только УФЛ – лучи с длиной волны 250-275 нм. Важно использовать средства защиты для глаз, так как длительное воздействие УФЛ - лучей может привести к повреждению сетчатки глаза. Тем не менее, использование и эффективность бактерицидных ламп в яйцекладе, инкубатории и помещении, где выращивается молодняк, подтверждено на практике.
Озон. Его молекулярная масса приблизительно такая же, как у кислорода или углекислого газа, поэтому он свободно проникает внутрь через поры яйца. Эта особенность придает ему бактерицидные свойства на поверхности скорлупы, однако озон может дестабилизировать оператора и эмбрион. Озон обладает токсичными, коррозийными и горючими свойствами и его применение требует строгих мер безопасности. Озон - сильный окислитель, он имеет свойство отделяться как диоксид, проникать через клеточные стенки, взаимодействовать с биологическими компонентами клетки, окисляя их. При обработке озоном инкубационные яйца укладывают в лотки и/или тележки. Озонирование проводят периодически с интервалом 3-5 дней с продолжительностью 8-12 часов. Концентрацию озона в воздухе поддерживают на уровне 4-15 мг/м. Применяют озон при дезинфекции помещений инкубатория и выращивания молодняка гусят в период технологических перерывов.
Влажная дезинфекция. Мойка яиц без сомнения один из лучших методов дезинфекции, однако, требующий особого внимания. Очень важно определиться с выбором санирующих и дезинфицирующих средств, некоторые из которых, особенно хлорсодержащие, имеют свойство вступать в реакцию с кутикулой скорлупы и терять свою активность. Другие из-за своего состава, как правило, блокируют поры и затрудняют газообмен. Для оптимальной и эффективной обработки важно использовать необходимое количество активного вещества в дезинфицирующем средстве, другими словами, концентрация дезсредства должна быть постоянной в течение всей обработки с регулярным контролем и своевременным «пополнением» дезсредства. Также важно, чтобы оборудование для мойки яйца содержалось в чистоте, любые накопления органических веществ должны своевременно удаляться, так как в них создаются теплые, влажные условия, являющиеся идеальной средой для роста многих бактерий, таких как Pseudomonassp. Вместо дезинфекции яиц, мойка в грязном оборудовании может привести к повторному загрязнению яйца, поэтому необходимо регулярно обрабатывать оборудование для мойки яиц, строго соблюдая график обработок. С практической точки зрения применения этого метода дезинфекции следует учесть загрязненность скорлупы яиц, сроки сбора и длительность хранения яиц. При мойке гусиных яиц смывается защитный слой яйца, происходит увеличение пор, улучшается обмен веществ эмбриона в процессе инкубации, что, безусловно, влияет на качество молодняка гусят. Однако следует учесть, что при смыве лизоцимной оболочки открываются поры не только для поступления кислорода, но и для патогенной микрофлоры. Поэтому в инкубационных шкафах следует в таких случаях тщательно проводить дезинфекционные мероприятия.
Протирание, шлифовка и полировка. Многие производители удаляют опилки, солому и помет со скорлупы, протирая, шлифуя и полируя яйца. Если не злоупотреблять, то это пригодный способ очистки поверхности скорлупы. Когда для яйца требуется только одну или две чистящие протирки, его можно рассматривать как инкубационное. Напротив, если оно требует более двух протирок, чтобы удалить грязь, это яйцо - не инкубационное. Использование стекловаты, минеральной ваты или наждачной бумаги с большой зернистостью не рекомендуется, поскольку они разрушают кутикулу и повреждают скорлупу.
Профилактика болезней при выводе молодняка. Для предупреждения перезаражения молодняка аэрогенным путем в период вывода гусят особое внимание необходимо уделять дезинфекции воздуха в выводных инкубаторах. Соблюдение инструкции по применению тех или иных препаратов для дезинфекции подразумевает неукоснительное соблюдение дозировок и времени экспозиции, так как отклонения опасны и могут отразиться на качестве молодняка и результатах инкубации. Фумигация формалином представляет собой один из эффективных и наименее затратных способов дезинфекции яиц. Однако важно строго следовать инструкциям ее проведения и принимать максимальные меры предосторожности для охраны здоровья работников. Какие бы меры ни были приняты, в отношении санитарного состояния инкубационных яиц вовремя инкубации, риск заражения остаётся. Частые повторные использования обработки формалином несут определённые риски. Избыточное использование формалина легко определить. Гусята будут глубокого жёлтого цвета и в тяжёлых случаях могут демонстрировать признаки респираторного стресса во время инкубации. Формалин раздражает дыхательные пути и может стать причиной чрезмерного поражения трахеи, что впоследствии может повлиять на рост и сохранность. Для обеззараживания воздуха на пол выводного шкафа за сутки до вывода гусят устанавливают емкость 37% раствора формалина 500-600 мл и воды в объёме 1 литра.
Для обеззараживания воздуха применяют так же молочную кислоту из расчета 100-200 мл на 1 м3 выводного шкафа. Его наливают в емкость размером 35х40 см, устанавливают на полу шкафа за двое суток до вывода гусят для самоиспарения.
Широко применяют дезинфекционные препараты аэрозольно с помощью различных форсунок и генераторов (ТАН, САГ и различного рода распылители).
Для других продуктов дезинфекции следуйте инструкциям поставщика и убедитесь, что они безопасны для эмбрионов и гусят.